用于 T 细胞扩增和活化的 Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28
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用于 T 细胞扩增和活化的 Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28
Gibco™

用于 T 细胞扩增和活化的 Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28

Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28 用于活化和扩增人 T 细胞。Dynabeads™了解更多信息
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货号容积(公制)
11161D0.4 mL
11131D2 mL
11132D5 x 2 mL
货号 11161D
价格(CNY)
1,369.00
飞享价
Ends: 31-Dec-2025
2,195.00
共减 826.00 (38%)
Each
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Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28 用于活化和扩增人 T 细胞。

Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28 的优势:

• 无需饲养层细胞即可活化 T 细胞
• 活化细胞仍保留体内类似功能
• 获得较大的可重现性,不会受到可溶性抗体或有丝分裂原污染
• 实现从 100 倍到 1000 倍的 T 细胞扩增

关于 Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28
Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28 提供了一种简单的 T 细胞活化与扩增方法,无需饲养层细胞(抗原递呈细胞)或抗原。直径均匀为 4.5 µm 的惰性超顺磁珠的大小与抗原呈递细胞相似,同时共价偶联抗 CD3 和抗 CD28 抗体。这两种抗体提供了主要和共刺激信号,优化用于高效 T 细胞活化和扩增。可使用重组 IL-2 刺激 T 细胞群扩增,活化或扩增后,可使用 DynaMag™ 磁力架轻松地去除磁珠。对于从 T 细胞克隆或 T 细胞系扩增抗原特异性 T 细胞,我们建议使用 Dynabeads™ 人 T 活化剂 CD3/CD28/CD137

起始样品
以来自全血或血沉棕黄层的单核细胞 (MNC)/外周血单核细胞 (PBMC) 或 T 细胞亚群(包括 CD3+ T 细胞、CD4+ T 细胞或 CD8+ T 细胞或调节性 T 细胞)开始。

下游应用
活化 T 细胞可在活化后不久进行分析(用于转染/转导或研究 TCR 信号转导、蛋白质组学、基因表达等)。培养基中可留存 T 细胞以分化为辅助性 T 细胞亚群或扩增多克隆/抗原特异性 T 细胞。

了解更多有关 Dynabeads™ 产品的信息
• 查找适用于各种应用的 Dynabeads™ 产品
•获取用于 Dynabeads™ 分离的磁力架
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
细胞类型T 细胞(全细胞群)
认证/合规ISO9001 和 ISO13485
克隆性单抗
最大浓度4 x 10 7 Beads/mL
描述Monoclonal antibodies covalently bound to DynaBeads magnetic Beads
适用于(设备)DynaMag™ Magnet
宿主种属小鼠
分离技术Dynabeads 无触摸或 Dynabeads FlowComp
产品线DYNAL™、Dynabeads™
数量0.4 mL
反应性
调控状态For Research Use Only
有效期24个月
运输条件室温
表面功能基团环氧树脂
目标种属
均一性Monosized 4.5 μm (CV <5%)
容积(公制)0.4 mL
直径(公制)4.5 μm
适用于(应用)Activation and Expansion of T-cells
材质磁性聚苯乙烯
产品类型抗体包被微球
Unit SizeEach
内容与储存
该产品由溶于磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 的 0.4 mL Dynabeads 人 T 活化剂 CD3/CD28 组成,pH 7.4,另含 0.1% 的人血清白蛋白 (HSA)。储存在 2–8°C 下

4 × 107 微珠/ml 悬液中。

常见问题解答 (FAQ)

我的Dynabeads磁珠不能很好地吸附到磁力架上,对此你们有什么建议吗?

请查看以下可能原因:

•溶液太粘稠。
•蛋白质间相互作用导致磁珠聚集。

尝试以下建议:
•延长分离时间(将管子留在磁力架上2-5分钟)。
•向裂解液中加入DNase I(约0.01 mg/mL)。
•将结合和/或清洗缓冲液中的Tween20浓度增加至约0.05%。
•向结合和/或清洗缓冲液中加入最多至20 mM 的β-巯基乙醇。

我想要分离较长的双链DNA片段,你们有什么产品可以推荐?

对于小于1 kb的生物素标记DNA,我们推荐使用Dynabeads M270链霉亲和素磁珠和MyOne C1磁珠。对于大于1kb的双链DNA分子,我们推荐Dynabeads KilobaseBINDER试剂盒。KilobaseBINDER试剂包括M-280链霉亲和素偶联的Dynabeads磁珠和一种含有专利的固定活化剂的结合液,可结合较长的生物素化DNA分子以进行分离。请点击以下链接(https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/dna-rna-purification-analysis/napamisc/capture-of-biotinylated-targets/immobilisation-of-long-biotinylated-dna-fragments.html),查看关于长的生物素化DNA片段分离的更多信息。

我能否使用Dynabeads磁珠分离单链DNA模板?

可以,Dynabeads磁珠可用于分离单链DNA。链霉亲和素Dynabeads磁珠能够以生物素化的DNA片段为靶标,通过使双链DNA变性,从而去除非生物素化链。链霉亲和素偶联的Dynabeads磁珠不会抑制任何酶活性。因此,可以在固相上直接对磁珠结合的DNA进行下一步处理。请点击以下链接(https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/dna-rna-purification-analysis/napamisc/capture-of-biotinylated-targets/preparing-single-stranded-dna-templates.html),查看关于单链DNA捕获的更多信息。

什么是磁化率?

磁化率能够衡量磁珠向磁力架迁移的速度,其大小取决于铁含量和氧化铁的特性。Dynabeads磁珠的磁化率是指质量磁化率,单位可以是cgs单位/g或m^3/kg(国际单位制)。对于亚铁磁性和铁磁性物质,质量磁化率取决于磁场强度(H),这些物质的磁化强度与H不是线性关系,而是随着场强增加而趋于饱和。因此, Dynabeads磁珠的质量磁化率是在固定条件下由标准操作程序而测定的。我们产品目录中给出的质量磁化率是国际单位制。磁化率由从高斯(cgs、emu)单位向国际单位的转换,是通过“高斯系数(emu/g或cgs/g)x 4π x 10^-3”而实现的。所得单位也被称为合理化质量磁化率,与(国际单位制)无量纲磁化率单位有所区别。通常,质量磁化率可用来衡量在非均匀磁场中影响物体的力(Fz)。测定Dynabeads磁珠的质量磁化率时,首先对样本称重,然后将样本放置于已知强度的磁场中。随后,再次称重得到样本重量(F1),并与关闭磁场时样本的重量(F0)进行对比。使用下述公式计算磁化率:K x 10^–3 = [(F1-F0) x m x 0.335 x 10^6],K表示质量为m的样本的质量磁化率。最后,将磁化率转换为国际单位制。

我如何确定Dynabeads磁珠的偶联效率?

有多种不同的方法可以检测配体与磁珠结合,包括光密度(OD)检测、荧光标记和放射性标记。

对于OD检测,应在配体固定到磁珠上之前检测配体的OD值,并将其与包被后上清液中剩余的配体浓度进行比较。这样可以粗略检测有多少蛋白与磁珠结合。 实验方案: 1.将分光光度计设置到正确的波长。使用偶联缓冲液作为空白组。 2.检测偶联前溶液的吸光值。根据配体的加入量,可能需要进一步稀释以读取吸光值。 3.检测偶联后溶液的吸光值。也可能需要进一步稀释以读取吸光值。 4.计算偶联效率,以“蛋白质摄取量%”表示,如下所示:[(偶联前溶液的吸光值x D) – (偶联后溶液的吸光值x D)] x 100/(偶联前溶液的吸光值 x D),D = 稀释倍数。 对于荧光标记,我们建议对配体结合量进行反向定量,即检测偶联上清液中剩余的配体量(与原始样本对比),而不是直接检测磁珠上的配体量。将标记的配体加入到磁珠中,并检测上清液中剩余多少配体(而不是结合到磁珠上的配体)。通过与开始时加入的总配体量相比,可以计算出结合到磁珠上的配体量。由于Dynabeads磁珠具有自发荧光,因此,我们不推荐直接检测与磁珠结合的配体的荧光,而是推荐这种间接方法。标记物可以是FITC/PE等。有些研究人员也成功使用了直接检测方法(采用流式细胞仪)。 在3种方法中,放射标记的灵敏度最高,但难度最大。该方法涉及到对配体的一部分进行放射性标记。在偶联前,使用示踪剂量的放射性标记的I-125,将其以一定比例与“冷”配体混合。使用闪烁(γ)计数器对磁珠进行检测,并将磁珠的cpm值与标准品对比,得到磁珠上配体的绝对量。 实验方案: 1.取出适量磁珠,并使用1 mL结合缓冲液清洗。 2.吸取适量人IgG,置于一个单独的管子中。 3.将人IgG与I-125标记的人IgG(30,000–100,000 cpm)混合。 4.使用结合缓冲液将人IgG与I-125标记的人IgG混合物稀释至100mL。 5.室温下孵育30分钟,使用闪烁计数器检测cpm值。 6.清洗磁珠(和包被层)4次,再次检测cpm值。 使用下述方程计算结合率%:(清洗后cpm值/清洗前cpm值)x100%。