NativePAGE™ Bis-Tris Mini Protein Gels, 4 to 16%, 1.0 mm
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NativePAGE™ Bis-Tris Mini Protein Gels, 4 to 16%, 1.0 mm
Invitrogen™

NativePAGE™ Bis-Tris Mini Protein Gels, 4 to 16%, 1.0 mm

Invitrogen NativePAGE Bis-Tris 凝胶系统是一种预制聚丙烯酰胺小型凝胶系统,可对非变性蛋白和蛋白复合物进行灵敏的高分辨率分析、分子量估算和纯度评估。
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Ends: 31-Dec-2025
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Invitrogen NativePAGE Bis-Tris 凝胶系统是一种预制聚丙烯酰胺小型凝胶系统,可对非变性蛋白和蛋白复合物进行灵敏的高分辨率分析、分子量估算和纯度评估。该系统由 Schägger 和 von Jagow 在蓝色非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 (BN PAGE) 技术的基础上开发而成,具有近中性的操作 pH 和去污剂兼容性,突破了传统非变性电泳的限制。

NativePAGE Bis-Tris 凝胶系统的优势包括:
宽分子量分析范围:15–10,000 kDa
中性 pH 分离,能够更好地保持蛋白复合物的非变性状态
可分离凝胶中不同等电点 (pI) 的所有蛋白
能够在非变性构象中对膜-蛋白复合物进行分析
能获得比传统 tris-甘氨酸非变性电泳更高的分离度

NativePAGE Bis-Tris 凝胶的工作原理
在 SDS-PAGE 中,SDS 充当电荷转移分子,它可以让蛋白带净负电荷,从而使蛋白变性并向阳极迁移。BN PAGE 采用考马斯 G-250 染料作为电荷转移分子,该染料附着在蛋白上使其带净负电荷,同时保持蛋白处于非变性、天然状态。NativePAGE Bis-Tris 凝胶系统具有近中性 pH 环境,可以为蛋白和凝胶基质提供较大稳定性,从而对非变性膜-蛋白复合物进行高度灵敏的分析,且相对于传统 Tris-甘氨酸预制胶系统能够提供出色的条带分辨率。

我们推荐使用用于传统湿式转印的 NuPAGE 转印缓冲液和 PVDF,以将蛋白转印到膜上。NuPAGE 转印缓冲液可维持电泳过程中建立的中性 pH 环境。硝酸纤维素膜与印迹膜兼容,因为硝酸纤维素膜与考马斯 G-250 染料结合得非常紧密。或者,也可使用 Invitrogen Power Blotter (PB0013) 进行快速半干转印或使用带 PVDF 膜的 iBlot 2 凝胶转印仪 (IB21001) 进行快速干转印。

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
规格
凝胶厚度1.0 mm
长度(公制)8 cm
分离模式分子量
产品线NativePAGE™
数量10 块凝胶/盒
推荐应用天然分子
上样容量最多 25 µL
有效期每 8 个月
运输条件湿冰
储存要求存储在 2°C 到 8°C。切勿冷冻。
宽度(公制)8 cm
适用于(设备)Mini Gel Tank 小型胶电泳槽, XCell SureLock Mini-Cell 电泳槽操作指南
凝胶百分比4 to 16%
凝胶尺寸小型
凝胶类型Bis-Tris 体系
分离范围30 至 10,000 kDa
分离类型天然分子
10孔
Unit SizeEach
内容与储存
一盒中包含 10 支凝胶。在 2°C 至 8°C 条件下储存。切勿冷冻。

常见问题解答 (FAQ)

我的NativePAGE凝胶在电泳中途停止电泳了。你们能否提供帮助?

在NativePAGE电泳期间,电流下降至低于1 mA很常见。大部分电源会将此记录为“空载”错误并自动关闭,导致电泳停止。一些电源可通过禁用或关闭“负载检测”功能来避免上述情况的发生。

使用XCell SureLock Mini-Cell进行Blue NativePAGE电泳后,如何清洁电泳槽?

您可尝试采用标准的清洁建议,即先用温和的洗涤剂清洗装置,再用去离子水冲洗。

免疫印迹检测后,我的膜上有很多点。哪里出错了?

以下是可能原因和解决方案:

膜的转印垫不干净或污染。使用转印垫前,用去污剂浸泡,然后用纯水彻底清洗。转印垫破损或变色后,则更换新的转印垫。
封闭不均匀。孵育皿必须足够大,使封闭液能够完全覆盖膜。每一步都需要摇动或搅动。

免疫印迹检测后,我得到了很多非特异性结合。你们有何建议?

以下是可能原因和解决方案:

- 膜被指纹或角蛋白污染:始终佩戴干净的手套并使用镊子来处理膜。处理膜时,仅触碰膜的边缘。
- 二抗浓度较高:按照推荐方法稀释二抗。如果背景仍然很高,但条带强度也很高,则应降低二抗的浓度。
- 一抗浓度较高:降低一抗浓度。
-一抗对蛋白标准品具有亲和力:向蛋白标准品生产商咨询蛋白标准品与一抗的同源性。
- SDS残留或转印后蛋白质与膜的结合较弱:遵循免疫检测前的膜准备说明。
- 封闭时间过短或洗膜时间过长:应确保每一步都达到指定时间。

免疫印迹检测后,我的蛋白质条带无法显色为什么?

以下是可能原因和解决方案:

- 一抗和二抗不匹配:所用二抗应该是针对一抗物种来源的抗体。
- 一抗稀释过度:1) 使用浓度更高的抗体溶液。2) 在4℃孵育更长时间(如,过夜)。3) 使用新鲜的抗体,应注意抗体溶液每使用一次,其有效抗体浓度都会有所降低。
- 封闭液含有可干扰一抗和/或二抗结合的物质:尝试交替使用封闭液± 温和的表面活性剂,如Tween-20(0.01–0.05% v/v)。基于脱脂奶粉、BSA、普通血清、明胶和这些物质的混合物以及其他原料,有多种封闭液配方可用。应注意BSA(1–5%)被认为是硝化纤维素膜的最佳封闭剂。通过点印迹法可轻松检验不同封闭液的效能。
- 一抗不能识别测试物种的相关蛋白质:1) 首先通过点印迹法评估一抗与蛋白质的反应能力。2)检查免疫原序列(如果已提供),确定您的蛋白质中是否含有该序列。3)如果无可用的免疫原序列,则通过PubMed/BLAST比对来评估您的目标蛋白与抗体的目标蛋白之间的同源程度。应注意,许多抗人源蛋白的抗体,也可识别非人源的灵长类动物蛋白,因为人源蛋白与灵长类动物蛋白具有高度的氨基酸同源性。相比之下,许多抗人源蛋白的抗体却不能识别啮齿类动物的相应蛋白(反之亦然)。应记住(注意),序列间显著的同源性并不能保证抗体可识别您的蛋白质。4)尽量每次电泳都使用推荐的阳性对照。
- 与膜结合的蛋白质不足,或样品中的目标蛋白不足:1) 凝胶上每个泳道中的蛋白质上样量至少为20–30 μg(作为起始点),因为,含量低于总蛋白量约0.2%的蛋白质,难以在免疫印迹中被检测到。2) 采用富集步骤以增加目标蛋白的浓度。例如,在转印核蛋白前制备2份细胞核裂解物,或在SDS-PAGE前进行免疫沉淀(IP)。3)减少用于裂解细胞或组织的细胞提取缓冲液的体积。4) 如果需要,应确保蛋白质提取缓冲液中使用新鲜配制的蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂。5)尽量使用推荐的阳性对照进行电泳。
- 很少或没有蛋白质转印到膜上:1) 使用可逆性蛋白质染料(如,Invitrogen可逆性膜蛋白质染料、丽春红S、酰胺黑)或预染分子量标准品,检验蛋白质转印效率。2) 确认是否使用了正确的电源极性进行转印。3)应记住,碱性pl值的蛋白质(如,组蛋白)和高分子量蛋白质的转印效果较差。4) 应记住,如果您的目标蛋白分子量较低(≤10 kDa),则转印速度可能比预期更快。5)如果您使用的是PVDF膜,应先将膜在甲醇中预浸泡,然后再浸泡在转膜液中。应注意,转膜液中的甲醇可增加膜与硝化纤维素膜的结合,但减少甲醇可增强高分子量蛋白质的转印效率。6) 低分子量蛋白质可能会穿过孔径为0.45 μm的硝化纤维素膜,因此,应改为使用0.2或0.1μm孔径的NC膜。
- 洗膜或封闭过度:1) 避免过度洗膜。若您的印迹存在其他问题,过度洗膜将导致目标蛋白无法显色。2) 避免由高浓度封闭液成分或较长孵育时间造成的过度封闭。封闭过度可妨碍抗体与蛋白的结合。明胶特别容易遮盖印迹膜上的蛋白质,因此应尽量避免使用。牛奶也会遮盖蛋白质,因此,可尝试使用0.5%牛奶或完全去除牛奶来取代封闭液中的5%牛奶。3)改为使用不同的封闭剂和/或缩短封闭时间。
- 重复使用相同的一抗稀释液 每次免疫印迹都应使用新鲜稀释的抗体,因为每重复使用一次稀释后的抗体,其有效浓度都会有所降低。同时,应记住抗体稀释液的稳定性降低,可能会很快失去活性。
- 与二抗结合的酶失效:1) 每次都使用新鲜稀释的二抗结合物。稀释液中的酶(和抗体)可能会很快失活。2) 若您使用的是辣根过氧化物酶(HRP)标记抗体,则不要在缓冲液中加入叠氮化钠。3)避免高血红素浓度(来自血液污染),否则会干扰基于HRP的检测。4) 避免在含有碱性磷酸酶-抗体结合物的缓冲液中加入磷酸盐,因为磷酸盐会抑制酶活性。
- 您的比色检测或其他检测试剂太旧并且已失活:1) 每次试验均使用新鲜的酶底物。2) 不要使用颜色发生改变或超过有效期的即用型底物试剂。3)除非产品使用手册指示,否则不要稀释底物溶液。