BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi Gateway™ 载体试剂盒
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BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi Gateway™ 载体试剂盒

在 BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi 表达系统中提供的 pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 表达载体可用于从慢病毒载体中高效引入和体内稳定表达短发夹 RNA (shRNA)。一种新型克隆方法使了解更多信息
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在 BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi 表达系统中提供的 pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 表达载体可用于从慢病毒载体中高效引入和体内稳定表达短发夹 RNA (shRNA)。一种新型克隆方法使 ∼50-bp DNA 寡核苷酸紧接着 U6 pol III 启动子进入 BLOCK-iT™ U6 入门载体。寡核苷酸设计用于表达可形成茎环结构的 RNA,该结构包含目的靶基因的正义区和反义区。然后将该 shRNA 重组到 pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 载体中。病毒产生和转导后,U6 启动子驱动的 shRNA 作为 RNAi 盒稳定整合。产生的 shRNA 避免了宿主防御机制,并将有效地产生 RNAi 基因敲低反应(图 1)。

pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 载体(图 2)可提供:

•与包含 RNAi 盒的 attL-flanked U6 Gateway™ 入门载体进行有效重组的 attR 位点
•高效慢病毒包装和目标 shRNA 递送所需的所有组分
•用于快速、有效筛选表达 shRNA 的稳定细胞系的杀稻瘟菌素选择标记 利用 BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi 表达系统,可实现分裂和非分裂哺乳动物细胞类型和动物模型中基因阻断的长期分析。

BLOCK-iT™ RNAi U6 入门载体试剂盒允许进行 shRNA 靶序列的简化克隆以在瞬时实验中验证效果。通过标准 Gateway™ LR 重组反应,将选定的 RNAi 表达盒从 BLOCK-iT™ RNAi U6 入门载体快速有效地重组到 pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 载体中(图 3)。
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
克隆方法Gateway™
构成或诱导系统组成型
输送类型慢病毒
产品线BLOCK-iT™,Gateway™
产品类型RNAi 表达载体试剂盒
数量20 次反应
RNAi 类型shRNA
选择试剂(真核生物)杀稻瘟菌素
载体pLenti
产品规格试剂盒
促进剂U6
Unit SizeEach
内容与储存
BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi Gateway™ 载体试剂盒包含 pLenti6/BLOCK-iT™-DEST 载体、pLenti6-GW/U6-laminshRNA 对照载体和 One Shot¤ Stbl3 感受态细胞。载体以超螺旋化和冻干形式提供。重悬后立即储存在 -20°C 下。感受态细胞储存在 -80°C 下。BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi 表达系统包含 BLOCK-iT™ 慢病毒 RNAi Gateway™ 载体试剂盒、BLOCK-iT™ U6 入门载体试剂盒、ViraPower™ Bsd 支持试剂盒、293FT 细胞系和 LR Clonase™ 酶混合物。按照相应试剂盒中的说明储存组分。在 -80°C 下储存 LR Clonase™ 混合物。妥善储存时,可保证稳定储存 6 个月。

常见问题解答 (FAQ)

我能否使用Gateway入门载体生成用于RNAi的入门克隆?

不能,您使用的入门载体应含有可使shRNA发生RNA聚合酶III依赖性表达所需的元件(即,Pol III启动子和终止子)。

什么是量效曲线或杀伤曲线?你们能否简述相关步骤?

在建立稳定细胞系时,量效曲线或杀伤曲线是一种用于确定最佳抗生素使用浓度的简单方法。为确定杀死全部未转染细胞所需的最低抗生素用量,可将未转染细胞置于含有不同浓度抗生素的培养基中生长。做量效曲线或杀伤曲线的基本步骤如下:

•以汇合度25%的细胞密度将未转染细胞接种到培养皿中,并加入含递增浓度抗生素的培养基使细胞生长。对于某些抗生素,您将需要计算活性药物量以控制批次间差异。
•每3-4天补充选择培养基。10-12天后,检测培养皿中的活细胞数。在出现细胞死亡前,细胞可能在选择培养基中分裂过1-2次。
•找到杀死全部细胞所需的最低抗生素浓度,即用于建立稳定细胞系所需的最佳抗生素浓度。

使用pENTR/U6入门载体或pENTR/H1/TO载体能否建立稳定细胞系?

很遗憾,pENTR/U6载体不含筛选标记;因此,只能实现瞬时RNAi分析。如果您想建立稳定细胞系,可通过LR反应将shRNA克隆进入合适的Gateway目的载体中,生成表达克隆。

pENTR/H1/TO载体含有Zeocin抗性基因,方便制作能够诱导表达目的shRNA的细胞系。可通过做一个杀死曲线,确定杀死未转染哺乳细胞所需的Zeocin最低浓度。请注意,Zeocin敏感性细胞不会聚集和脱离培养皿,但可能会出现体积增大、细胞形态异常、细胞质中形成较大的空泡或细胞膜/和膜分解。

设计我的克隆用shRNA时,应使用哪种环序列?你们是否有可遵循的指南?

您可使用长度在4-11个核苷酸范围内的任何环序列,但是,通常优先选择较短的环(即,4-7个核苷酸)。应避免使用含有胸腺嘧啶核苷酸(T)的环序列,否则有可能会导致过早转录终止,特别是在目标序列本身以1个或多个T核苷酸终止的情况下。以下是一些我们推荐使用的环序列:

•5’ – CGAA – 3’
•5’ – AACG – 3’
•5’ – GAGA – 3’

在设计shRNA用于克隆时,关于转录起始有哪些注意事项?

shRNA的转录从U6启动子序列末端后面的第一个碱基开始。在上游链寡核苷酸中,转录起始位点相当于4 碱基 CACC序列后的第一个核苷酸,加入4 碱基 CACC序列是为了实现定向克隆。我们建议以鸟嘌呤核苷酸(G)作为shRNA序列的起始,因为天然U6snRNA的转录是以G开始的。请注意下列情况:

•如果G是目标序列的一部分,则将G并入上游链寡核苷酸的茎序列,并在上游链寡核苷酸的3’端加一个互补C。
•如果G不是目标序列的第一个碱基,我们建议直接在上游链寡核苷酸5’末端紧随CACC突出序列后加一个G。这种情况下,不要在上游链寡核苷酸的3’末端添加互补C。注意:我们已经发现,在这种情下添加互补C,可导致shRNA活性降低。或者,如果没有特别想以G作为转录起始,则应使用腺嘌呤核苷酸(A),而不要使用C或T。但是,应注意的是,除了G以外,使用其它任何一种核苷酸都会影响起始效率和位置。