潮霉素 B (50 mg/mL)
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潮霉素 B (50 mg/mL)
Gibco™

潮霉素 B (50 mg/mL)

潮霉素 B 是一种从细菌吸水链霉菌中纯化的水溶性抗生素。潮霉素 B 的作用机制为与细菌核糖体的 80S 亚单位结合,进而抑制蛋白合成。Gibco™ 潮霉素了解更多信息
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潮霉素 B 是一种从细菌吸水链霉菌中纯化的水溶性抗生素。潮霉素 B 的作用机制为与细菌核糖体的 80S 亚单位结合,进而抑制蛋白合成。Gibco™ 潮霉素 B 在 200–500 µg/mL 浓度范围内用作细菌选择抗生素。本产品以 50 mg/mL 溶液形式提供。

对潮霉素 B 的耐药性由大肠杆菌潮霉素抗性基因(hyghph)赋予。潮霉素 B 的作用机制与 Geneticin™、杀稻瘟菌素 S 或 Zeocin™ 选择试剂不同,因此它是双重选择实验的极佳之选(参见选择抗生素)。

其他选择和更多信息
我们提供多种粉末和液体规格的抗生素和抗真菌药。

参见完整列表或查找用于以下用途的产品:
污染控制
真核细胞和细菌筛选

参见筛选抗生素工作浓度的建议。

进一步了解抗生素和抗真菌剂在细胞培养中的应用,并查看关于排除培养污染的指南
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
最大浓度50 mg/mL
培养类型哺乳动物细胞培养,昆虫细胞培养
适用于(应用)真核细胞选择⁄稳定细胞系生成
数量20 mL
运输条件室温
形式液体
产品类型Geneticin
无菌无菌
Unit SizeEach
内容与储存
储存条件:2 至 8°C
运输条件:环境

常见问题解答 (FAQ)

哺乳动物细胞的稳转筛选过程中可一起使用哪些种类的抗生素(Geneticin,Zeocin,潮霉素B,杀稻瘟素和嘌呤霉素)?

我们所有的抗生素(Geneticin,Zeocin,潮霉素B,杀稻瘟素和嘌呤霉素)均可共用于多重稳转细胞系的建立。不过,需要针对每一种抗生素组合来获取杀菌曲线,因为当与其他抗生素联用时,细胞对某一特定抗生素的灵敏性会出现增加的趋势。

我该如何对我的培养物去污染?

当不可替代的培养物被污染时,研究人员可能会试图控制或消除污染。

1.用户需要确定污染的来源是细菌、真菌、支原体,还是酵母。请点击此处(https://www.thermofisher.com/us/en/home/references/gibco-cell-culture-basics/biological-contamination/bacterial-contamination.h%E2%84%A2l)阅读更多信息,以了解每一种污染的特性。
2.把受污染的培养物跟其他细胞系进行隔离。
3.使用一款实验室消毒剂清洁培养箱和层流柜,并检查HEPA过滤器。
4.高浓度的抗生素和抗真菌剂可能对一些细胞系有毒性。因此,需进行剂量效应测试来确定何种浓度水平的抗生素或抗真菌会造成毒性。这一操作对于使用Gibco Fungizone一类的抗真菌剂或泰乐菌素一类的抗生素尤其重要。

下列操作为我们确定毒性水平和对培养物去污染的推荐步骤:

1.对细胞进行分离,计数, 使用不含抗生素的培养基稀释将细胞稀释至常规传代的浓度。
2.将细胞悬液分入多孔培养板或几个小培养瓶中。向每一培养孔中添加不同浓度的特定抗生素。举例来说,我们推荐以如下浓度测试Gibco Fungizone试剂:0.25,0.50,1.0,2.0,4.0和8.0 µg/mL。
3.每日观察细胞脱落,出现空泡,融汇度降低,细胞变圆一类的毒性效应。
4.一旦确定了抗生素的毒性浓度水平,就可使用比毒性浓度低一至两倍的抗生素浓度来培养细胞两至三代。
5.在不含抗生素的培养基中培养一代。
6.重复步骤4。
7.在不含抗生素的培养基中培养细胞四至六代,以确定污染是否成功被消除。

你们提供哪些抗生素来帮助用户控制或减少细胞培养中的污染情况?

请访问如下页面(https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-culture/mammalian-cell-culture/antibiotics.html)浏览我们提供的细胞培养相关的抗生素产品。

Which of your antibiotics (Geneticin, Zeocin, Hygromycin B, Blasticidin, and Puromycin) can be used together for stable selection in mammalian cells?

All of our antibiotics (Geneticin, Zeocin, Hygromycin B, Blasticidin, and Puromycin) can be used together for making multiple stable cell lines. However, kill curves will need to be performed for each combination of antibiotics since sensitivity to a given antibiotic tends to increase when combined with other antibiotics.

What are the recommended concentrations of antibiotics to use for selection in prokaryotes and eukaryotes?

For best results, optimal concentrations for selection should be determined empirically in each unique experiment through dose response curves. However, to get a general idea of concentrations that have worked for individual cell types, please click on the following url: http://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-culture/transfection/selection.html or type in “Selection Antibiotics” into our main search on www.thermofisher.com.