Dynabeads™ 小鼠 CD4
Dynabeads™ 小鼠 CD4
Invitrogen™

Dynabeads™ 小鼠 CD4

Dynabeads™ 小鼠 CD4 是一种磁珠,可提供稳健的通用工具,用于直接从任何样品中分离或去除小鼠 CD4+ T 细胞,包括组织酶切物,如脾脏或淋巴结、全血、骨髓和单核细胞 (MNC)了解更多信息
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货号数量
11445D5 mL
货号 11445D
价格(CNY)
6,680.00
飞享价
Ends: 31-Dec-2025
13,874.00
共减 7,194.00 (52%)
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Dynabeads™ 小鼠 CD4 是一种磁珠,可提供稳健的通用工具,用于直接从任何样品中分离或去除小鼠 CD4+ T 细胞,包括组织酶切物,如脾脏或淋巴结、全血、骨髓和单核细胞 (MNC)。
•从任何样品中快速分离小鼠 CD4+ T 细胞 – 无需柱
• 阳性分离以用于分子下游检测或高效去除小鼠 CD4+ T 细胞

回收的细胞具有出色的得率、纯度和活力
Dynabeads™ 小鼠 CD4 是均匀、具有超顺磁性的微珠(4.5 µm 直径),可从脾脏或淋巴结中轻松分离小鼠 CD4+ 细胞,但可能使用任何单细胞悬浮液。Dynabeads™ 小鼠 CD4 微珠包被有原代单克隆抗体,对主要在小鼠辅助性 T 细胞上表达的 CD4 膜抗原具有特异性。在培养管中加入 Dynabeads™ 小鼠 CD4,其会在较短的孵育过程中结合 CD4+ 细胞,然后用磁力架将微珠结合细胞与未结合细胞分离开来。这种快速且温和的分离方法不需要使用色谱柱,有助于确保分离的 CD4+ 阳性细胞的高纯度、回收率和活力。

适用于下游分子检测的去除和阳性分离
由于用于分离的强大磁体,Dynabeads™ 小鼠 CD4 可用于黏性样品,如来自组织、全血和骨髓的单细胞混悬液,并可在约 30 分钟内有效去除小鼠 CD4+ 细胞。当用于阳性分离以供下游分子研究时,Dynabeads™ 小鼠 CD4 还可以高效回收高纯度的活细胞;例如,细胞被裂解但仍与微珠附着并进一步纯化核酸或蛋白质。请注意,这些微珠不会释放完整的细胞,因此,如果您想要分离用于基于细胞的应用的小鼠 CD4+ 细胞,或者需要使用流式细胞分析检查样品,则应将 DETACHaBEAD™ 小鼠 CD4 与本产品(用于无微珠和抗体细胞)或 Dynabeads™ FlowComp 小鼠 CD4 细胞(用于无微珠细胞的全套试剂盒)结合使用。

请从我公司的小鼠 CD4 分离产品系列中选择适合您的产品。

仅供科研使用。不可用于人或动物的治疗或诊断。
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
细胞类型T 细胞 (CD4)
分离技术阴性分离
池数量处理总计 ∼2 x 10^9 个细胞
输出可行性>95%
产品线DYNAL™,Dynabeads™
纯度或质量等级研究级
数量5 mL
反应性小鼠
样品类型淋巴结,血液,脾脏
运输条件室温
原始材料细胞数量1 x 10^7 个细胞/分离
目标种属小鼠
直径(公制)4.5 μm
产品类型抗体包被微球
Unit SizeEach
内容与储存
本产品含:5 mL Dynabeads™小鼠 CD4 (L3T4) 包被抗 L3T4 单克隆抗体。
L3T4 抗原在所有常见小鼠品系的小鼠胸腺细胞和成熟
T 细胞的 T 辅助细胞亚群上表达。
在 2-8°C 下储存

常见问题解答 (FAQ)

我的Dynabeads磁珠不能很好地吸附到磁力架上,对此你们有什么建议吗?

请查看以下可能原因:

•溶液太粘稠。
•蛋白质间相互作用导致磁珠聚集。

尝试以下建议:
•延长分离时间(将管子留在磁力架上2-5分钟)。
•向裂解液中加入DNase I(约0.01 mg/mL)。
•将结合和/或清洗缓冲液中的Tween20浓度增加至约0.05%。
•向结合和/或清洗缓冲液中加入最多至20 mM 的β-巯基乙醇。

我想要分离较长的双链DNA片段,你们有什么产品可以推荐?

对于小于1 kb的生物素标记DNA,我们推荐使用Dynabeads M270链霉亲和素磁珠和MyOne C1磁珠。对于大于1kb的双链DNA分子,我们推荐Dynabeads KilobaseBINDER试剂盒。KilobaseBINDER试剂包括M-280链霉亲和素偶联的Dynabeads磁珠和一种含有专利的固定活化剂的结合液,可结合较长的生物素化DNA分子以进行分离。请点击以下链接(https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/dna-rna-purification-analysis/napamisc/capture-of-biotinylated-targets/immobilisation-of-long-biotinylated-dna-fragments.html),查看关于长的生物素化DNA片段分离的更多信息。

我能否使用Dynabeads磁珠分离单链DNA模板?

可以,Dynabeads磁珠可用于分离单链DNA。链霉亲和素Dynabeads磁珠能够以生物素化的DNA片段为靶标,通过使双链DNA变性,从而去除非生物素化链。链霉亲和素偶联的Dynabeads磁珠不会抑制任何酶活性。因此,可以在固相上直接对磁珠结合的DNA进行下一步处理。请点击以下链接(https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/dna-rna-purification-analysis/napamisc/capture-of-biotinylated-targets/preparing-single-stranded-dna-templates.html),查看关于单链DNA捕获的更多信息。

什么是磁化率?

磁化率能够衡量磁珠向磁力架迁移的速度,其大小取决于铁含量和氧化铁的特性。Dynabeads磁珠的磁化率是指质量磁化率,单位可以是cgs单位/g或m^3/kg(国际单位制)。对于亚铁磁性和铁磁性物质,质量磁化率取决于磁场强度(H),这些物质的磁化强度与H不是线性关系,而是随着场强增加而趋于饱和。因此, Dynabeads磁珠的质量磁化率是在固定条件下由标准操作程序而测定的。我们产品目录中给出的质量磁化率是国际单位制。磁化率由从高斯(cgs、emu)单位向国际单位的转换,是通过“高斯系数(emu/g或cgs/g)x 4π x 10^-3”而实现的。所得单位也被称为合理化质量磁化率,与(国际单位制)无量纲磁化率单位有所区别。通常,质量磁化率可用来衡量在非均匀磁场中影响物体的力(Fz)。测定Dynabeads磁珠的质量磁化率时,首先对样本称重,然后将样本放置于已知强度的磁场中。随后,再次称重得到样本重量(F1),并与关闭磁场时样本的重量(F0)进行对比。使用下述公式计算磁化率:K x 10^–3 = [(F1-F0) x m x 0.335 x 10^6],K表示质量为m的样本的质量磁化率。最后,将磁化率转换为国际单位制。

我如何确定Dynabeads磁珠的偶联效率?

有多种不同的方法可以检测配体与磁珠结合,包括光密度(OD)检测、荧光标记和放射性标记。

对于OD检测,应在配体固定到磁珠上之前检测配体的OD值,并将其与包被后上清液中剩余的配体浓度进行比较。这样可以粗略检测有多少蛋白与磁珠结合。 实验方案: 1.将分光光度计设置到正确的波长。使用偶联缓冲液作为空白组。 2.检测偶联前溶液的吸光值。根据配体的加入量,可能需要进一步稀释以读取吸光值。 3.检测偶联后溶液的吸光值。也可能需要进一步稀释以读取吸光值。 4.计算偶联效率,以“蛋白质摄取量%”表示,如下所示:[(偶联前溶液的吸光值x D) – (偶联后溶液的吸光值x D)] x 100/(偶联前溶液的吸光值 x D),D = 稀释倍数。 对于荧光标记,我们建议对配体结合量进行反向定量,即检测偶联上清液中剩余的配体量(与原始样本对比),而不是直接检测磁珠上的配体量。将标记的配体加入到磁珠中,并检测上清液中剩余多少配体(而不是结合到磁珠上的配体)。通过与开始时加入的总配体量相比,可以计算出结合到磁珠上的配体量。由于Dynabeads磁珠具有自发荧光,因此,我们不推荐直接检测与磁珠结合的配体的荧光,而是推荐这种间接方法。标记物可以是FITC/PE等。有些研究人员也成功使用了直接检测方法(采用流式细胞仪)。 在3种方法中,放射标记的灵敏度最高,但难度最大。该方法涉及到对配体的一部分进行放射性标记。在偶联前,使用示踪剂量的放射性标记的I-125,将其以一定比例与“冷”配体混合。使用闪烁(γ)计数器对磁珠进行检测,并将磁珠的cpm值与标准品对比,得到磁珠上配体的绝对量。 实验方案: 1.取出适量磁珠,并使用1 mL结合缓冲液清洗。 2.吸取适量人IgG,置于一个单独的管子中。 3.将人IgG与I-125标记的人IgG(30,000–100,000 cpm)混合。 4.使用结合缓冲液将人IgG与I-125标记的人IgG混合物稀释至100mL。 5.室温下孵育30分钟,使用闪烁计数器检测cpm值。 6.清洗磁珠(和包被层)4次,再次检测cpm值。 使用下述方程计算结合率%:(清洗后cpm值/清洗前cpm值)x100%。