Bac-to-Bac™ N-His TOPO™ 克隆试剂盒
Bac-to-Bac™ N-His TOPO™ 克隆试剂盒
Gibco™

Bac-to-Bac™ N-His TOPO™ 克隆试剂盒

Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达是一种高效的方法,可用于在昆虫细胞中产生高水平蛋白表达的杆状病毒。它基于大肠杆菌中位点特异性转座的重组病毒传代,而非昆虫细胞中的同源重组。新:pFastBacTOPO™ 载体!可靠和快速蛋白表达Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达系统比传统杆状病毒表达系统更快且更容易,并且保持高水平的蛋白表达。它基于大肠杆菌中的位点特异性的转座,而非昆虫细胞中的同源重组。Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达系统在学术文献中受到高度重视。自了解更多信息
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Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达是一种高效的方法,可用于在昆虫细胞中产生高水平蛋白表达的杆状病毒。它基于大肠杆菌中位点特异性转座的重组病毒传代,而非昆虫细胞中的同源重组。新:pFastBacTOPO™ 载体!

可靠和快速蛋白表达
Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达系统比传统杆状病毒表达系统更快且更容易,并且保持高水平的蛋白表达。它基于大肠杆菌中的位点特异性的转座,而非昆虫细胞中的同源重组。Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达系统在学术文献中受到高度重视。自 2000 年以来每年至少有 80 次引用!

传统杆状病毒系统需要纯化和扩增起始低滴度的病毒上清液。这需要耗时的空斑试验。然而,Bac-to-Bac™ pFastBac™ 载体与 DH10Bac™ 大肠杆菌感受态细胞中的亲本杆粒重组,以形成表达杆粒。将杆粒转染至昆虫细胞,在第一次转染中快速产生高滴度的纯重组杆状病毒颗粒。您将节省数周珍贵时间。在第 10 天采集纯 P2 杆状病毒储备液,无需使用繁琐的噬斑试验(参见图 1)

高表达、易于筛选
pFastBac™ 使用强效多角体蛋白启动子可在各种昆虫细胞系(如 Sf9、Sf21 和 High Five™ 细胞)中产生高水平的表达。

新添加:
Bac-to-Bac™ pFastBac 载体现在也可以 pFastBacTOPO™ 载体的形式提供。pFastBacTOPO™ 载体是 Blunt™ TOPO™ 载体,随附 Mach1™-T1R 大肠杆菌,便于克隆和 pFastBac⁄GOI 增殖。新载体使您能够:

•使用保真度极高的 PCR 酶(如 Accuprime™ Pfx SuperMix)扩增您的目的基因 (GOI)。

•TOPO™ 仅需 5 分钟即可将平末端 PCR 产物克隆到新载体中!

•在氨苄青霉素选择性平板上平板接种后 8 小时可见菌落,因为与其他标准克隆菌株相比,Mach1™-T1R 大肠杆菌细胞具有更快的倍增时间。

•使用 Bac-to-Bac™ N-His TOPO™ 克隆或表达试剂盒,您可以生产一个带有 TEV 切割位点的 N 端 His 融合蛋白,以使用镍螯合树脂(Invitrogen ProBond™ 纯化系统)进行纯化,并使用常用的 Invitrogen AcTEV ™ 蛋白酶辅助生成天然蛋白。

新载体兼具 TOPO™ 克隆技术与高度受到重视的 Bac-to-Bac™ 杆状病毒表达功能,可实现轻松克隆及高水平的蛋白表达。
pFastBacTOPO™ 载体以克隆和表达试剂盒形式提供。
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
耐抗生素细菌氨苄青霉素 (AmpR)、庆大霉素 (GmR)
细胞系High Five™,Sf21,Sf9
细胞类型感受态细胞
克隆方法Blunt TOPO
表达机制昆虫细胞表达
表达系统杆状病毒
适用于(应用)蛋白表达,病毒疫苗生产
反应次数20 次反应
产品线Bac-to-Bac、TOPO
产品类型克隆试剂盒
促进剂多角体蛋白
蛋白标记His 标签 (6x)
选择试剂(真核生物)氨苄青霉素、庆大霉素
载体pFastBac/NT-TOPO
Unit SizeEach
内容与储存
Bac-to-Bac™ N-His TOPO™ 克隆试剂盒的试剂盒内容物(有关详细信息请参见手册)
•用于 20 次 topo 克隆反应的载体试剂盒:
o 包含 N 端 His 标签和 TEV 切割位点的 pFastBac⁄NT-TOPO™ 载体。
o pFastBac⁄NT-Gus 对照质粒(对照表达载体)
o 提供的其他试剂:10x PCR、dNTP 混合物、盐溶液、无菌水、对照 PCR 模板、多角体蛋白正向引物、SV40 pA 反向引物
•含感受态细胞的试剂盒(20 次反应):
o One Shot™ Mach1-T1R 化学感受态大肠杆菌
载体试剂盒:储存于 -20°C 下
One Shot™ Mach1-T1R 化学感受态大肠杆菌:储存于 -80°C 下

常见问题解答 (FAQ)

使用BaculoDirect表达试剂盒后,无法检测到任何重组融合蛋白。可能原因是什么?你们有何建议?

请检验入门克隆的构建,应确保插入片段位于载体读码框内。在LR反应后,利用PCR法分析重组病毒DNA,确认插入片段的大小和方向均正确。对PCR产物进行测序,确认用于表位标签表达的读码框正确。

我的P1病毒储液滴度较低,如何能够生成高滴度储液?

为得到高滴度储液,应使用P1储液再次感染细胞并生成P2高滴度储液。按照BaculoDirect使用手册第18页的说明,生成P2储液。

我进行了LR反应,并随后转染到Sf9/Sf21昆虫细胞中,但即使72小时后仍未观察到任何感染迹象。我该怎么办?

请查看以下建议:

•在转染到昆虫细胞中之前,利用PCR分析检验LR反应。
•在转染实验中,我们建议使用无添加的Grace’s昆虫细胞培养基代替无血清培养基,因为无血清培养基中的有些成分可能干扰转染。
•转染期间,应保证无FBS、无添加剂、无抗生素,因为这些物质中的蛋白质会干扰Cellfectin II试剂。
•LR重组反应中,以pENTR/CAT质粒为阳性对照,以Cellfectin II试剂(模拟转染)作为阴性对照。
•确保细胞处于对数生长期,存活率高于95%,细胞使用量应与使用手册的建议一致。
•若转染效率较低,细胞可能需要1周时间才能出现病毒感染迹象;继续培养,同时每日观察细胞的感染迹象。

更昔洛韦溶液中出现沉淀。我该怎么办?

在37°C水浴中温浴更昔洛韦5-10分钟,然后涡旋数分钟。沉淀应该重新溶解于溶液中。

我在使用His标签纯化柱对在昆虫细胞中表达的分泌型蛋白进行纯化时,未得到蛋白。为什么?我该怎么办?

用于培养昆虫细胞的培养基通常具有酸性pH(6.0-6.5)或含有电子供应基团,可阻止6xHis标签蛋白与Ni-NTA发生结合。昆虫细胞生长培养基所含谷氨酰胺、甘氨酸或组氨酸等氨基酸的浓度显著高于哺乳细胞生长培养基,这些氨基酸可与6xHis标签蛋白竞争Ni-NTA基质上的结合位点。例如,Grace’s培养基(Life Technologies)含有约10 mM谷氨酰胺、10 mM甘氨酸和15 mM组氨酸。

使用含适当成分和pH(8.0)的缓冲液对培养基进行透析,透析用缓冲液与在天然条件下进行纯化所使用的推荐裂解缓冲液相似,通常可恢复最佳的结合条件。应注意,选用的培养基可能导致出现白色沉淀(可能由不溶性盐组成),但6xHis标签蛋白通常留在溶液中。使用无蛋白质的培养基时,可通过蛋白质定量进行检测;或者利用免疫印迹分析法检测6xHis标签蛋白的含量。离心后,可从清澈的上清液中直接纯化6xHis标签蛋白。