pcDNA™3.3-TOPO™ TA Cloning™ 试剂盒
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pcDNA™3.3-TOPO™ TA Cloning™ 试剂盒

pcDNA™3.3-TOPO™ TA Cloning™ 试剂盒设计用于在贴壁细胞以及 FreeStyle™ MAX CHO 和 FreeStyle™ MAX了解更多信息
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K83000120 reactions
货号 K830001
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pcDNA™3.3-TOPO™ TA Cloning™ 试剂盒设计用于在贴壁细胞以及 FreeStyle™ MAX CHO 和 FreeStyle™ MAX 293 悬浮细胞系统中实现异常高水平的转基因表达。pcDNA3.3™-TOPO™ TA Cloning™ 试剂盒随附 TOPO™ 适应性质粒载体、用于克隆的所有试剂和 One Shot™ TOP10 感受态细胞。pcDNA™3.3-TOPO™ 载体具有如下优点:

•TOPO™ 适用于克隆 PCR 产物,效率为 >85%
• 由于存在天然巨细胞病毒 (CMV) 即刻早期启动子/增强子序列 (672 bp) 而在多种哺乳动物细胞中实现高水平基因表达
• 载体适用于大规模蛋白表达
• 可生成天然蛋白,而不生成外源氨基酸

pcDNA™3.3-TOPO™ 载体也包括在 OptiCHO™ 抗体表达系统中,用于克隆和表达抗体轻链和重链。
仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
构成或诱导系统组成型
输送类型转染
适用于(应用)蛋白生产、组成型表达
产品类型TOPO TA Cloning 试剂盒
数量20 reactions
选择试剂(真核生物)Geneticin™ (G-418)
载体pcDNA
克隆方法TOPO™-TA
产品线TOPO™、pcDNA™, pcDNA™
促进剂CMV
蛋白标记未标记
Unit SizeEach
内容与储存
盒 1(在 -20°C 下储存)
• 20 µL pcDNA™ TOPO™ 适应性 3.3-TOPO™ 载体 (5–10 ng/µL)
• 100 µL 10X PCR 缓冲液
• 10 µL dNTP 混合物
• 50 µL 盐溶液
• 1 mL 无菌水
• 10 µL 对照 PCR 模板 (50 ng/µL)
• 10 µL 对照 PCR 引物(各 100 ng/µL)
• 20 µL CMV 正向测序引物 (100 ng/µL)
• 20 µL TK polyA 反向测序引物 (100 ng/µL)
• 10 µL pcDNA™3.3-TOPO™/lacZ 表达对照质粒 (500 ng/µL)

盒 2(在 -80°C 下储存)
• 11 × 50 µL TOP10 大肠杆菌
• 50 µL pUC19 对照 DNA (10 pg/µL)
• 6 mL S.O.C.培养基

常见问题解答 (FAQ)

我可将感受态细胞存储在液氮中吗?

我们不建议将感受态细胞保存在液氮中,因为极端温度会损害细胞。另外,装感受态细胞的塑料管子可能承受不了如此低的温度,从而发生破裂。

我应该如何存储我的感受态E. Coli?

我们推荐将感受态细胞存储在-80摄氏度。高于这个温度,即使存储时间很短,也会显著降低其转化效率。

pcDNA 3.4-TOPO TA与pcDNA 3.3-TOPO TA载体之间的区别是什么?

pcDNA 3.4-TOPO TA载体在pcDNA 3.3-TOPO TA载体上进行了一个重要改进。它包含了能够使蛋白水平相比pcDNA 3.3-TOPO TA载体提升2-3倍的WPRE元件(旱獭转录后调控元件)。

我进行了稳转筛选,但我的抗生素耐受克隆中未表达我的目的基因。发生了什么问题?

这里列举了一些可能的原因与解决方案:

•所用检测法可能不适当或不够灵敏: ◦我们推荐您优化检测方案或寻找更为灵敏的方法。如果使用考马斯亮蓝染色/银染法检测过该蛋白,我们则推荐您使用免疫印迹法来增加检测灵敏度。裂解产物中存在的内源蛋白可能会在考马斯亮蓝染色/银染过程中掩盖目的蛋白。如果可能,我们推荐您在免疫印迹实验中包括一个阳性对照。
•筛选到的克隆数不够:至少筛选出20个克隆。
•在稳转筛选中使用了不适当的抗生素浓度:请确保正确获取了抗生素的杀死曲线。由于某一既定抗生素的效力依赖于细胞类型,血清,培养基和培养技术,因此必须在每次进行稳定筛选的时候确定抗生素的用量。如果采用的培养基或血清条件明显不同,则即使是我们所提供的稳转细胞系对于我们推荐的剂量也可能出现更敏感或更不敏感的情况。
•基因产物(即使低水平)的表达可能与该细胞系的生长不相容(如毒性基因):使用一个可诱导的表达系统。
•阴性克隆可能由基因表达的关键载体位点处优先发生了线性化所致:在一个不影响表达的位点实施载体线性化,如在细菌抗药性标志物序列中。

我正在使用一款哺乳动物表达载体,但未成功表达我的蛋白。你们能帮我解决这一难题么?

这里列举了一些可能的原因与解决方案:

•尝试试剂盒自带的表达对照。
•可能的检测问题:
◦检测瞬转的表达蛋白可能有难度,因为转染效率可能过低,以致用于整个转染群体的评估手段无法成功实现检测。我们推荐您通过稳转筛选或采用能够逐个检测单一细胞的技术手段来优化您的转染操作。您也可尝试通过改变启动子或细胞类型来提高表达水平。
◦细胞中的蛋白表达水平对于所选择的检测方法来说可能过低。我们推荐您优化检测方案或寻找更为灵敏的方法。如果使用考马斯亮蓝染色/银染法检测过该蛋白,我们则推荐您使用免疫印迹法来增加检测灵敏度。裂解产物中存在的内源蛋白可能会在考马斯亮蓝染色/银染过程中掩盖目的蛋白。如果可能,我们推荐您在免疫印迹实验中包括一个阳性对照。
◾蛋白可能降解或截短了:使用Northern杂交进行检测。
◾可能的时程问题:由于蛋白表达随时间延长而发生的变化依赖该蛋白的天然属性,我们一般推荐您先获取一份表达的时程曲线。尝试进行一次时程分析将帮助您确定最优的表达时间窗。
◾可能的克隆问题:通过限制性酶切和/或测序来验证克隆。