NuPAGE™ Bis-Tris 迎新套装,10%
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Invitrogen™

NuPAGE™ Bis-Tris 迎新套装,10%

NuPAGE Bis-Tris 迎新套装可提供开始使用小型凝胶槽所需的所有必要的 NuPAGE 凝胶、缓冲液和试剂。
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货号
NP030A10孔
NP030B12孔
NP030C15孔
货号 NP030A
价格(CNY)
3,784.00
Online Exclusive
Ends: 31-Dec-2025
5,617.00
共减 1,833.00 (33%)
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NuPAGE Bis-Tris 迎新套装可提供开始使用小型凝胶槽所需的所有必要的 NuPAGE 凝胶、缓冲液和试剂。Mini Gel Tank 小型胶电泳槽兼容所有 Invitrogen Novex、NuPAGE 和 Bolt 微型凝胶。每个微型凝胶槽每次可最多容纳两块凝胶。独特的凝胶罐设计可实现便利的凝胶并行加载,加强使用期间的观察。运行时间可能因所使用的缓冲液条件和电源而异。

NuPAGE Bis-Tris 预制胶迎新 套装包含:
• 小型凝胶槽 (A25977)
• NuPAGE Bis-Tris 小型凝胶(2 盒,20 块凝胶)
•NuPAGE MES SDS 电泳缓冲液,20X (NP0002)
• NuPAGE LDS 样品缓冲液,4X (NP0007)
• NuPAGE 样品还原剂,10X (NP0009)
• PageRuler Plus 预染蛋白分子量标准品,10-250 kDa (26619)

关于小型凝胶槽
小型凝胶槽兼容所有 Invitrogen Novex、NuPAGE 和 Bolt 小型凝胶。每个微型凝胶槽每次可最多容纳两块凝胶。独特的凝胶罐设计可实现便利的凝胶并行上样,加强使用期间的观察。运行时间可能因所使用的缓冲条件和电源而异。

关于 NuPAGE Bis-Tris 预制胶
Invitrogen NuPAGE Bis-Tris 蛋白凝胶是预制聚丙烯酰胺凝胶,可在变性条件下实现宽范围分子量蛋白的理想分离。与传统 Tris- 甘氨酸预制胶不同,NuPAGE Bis-Tris 预制胶具有中性 pH 环境,可尽量减少蛋白质修饰。使用 NuPAGE Bis-Tris 预制胶制备蛋白质以用于测序、质谱分析、以及任何其他蛋白质完整性至关重要的技术。此外,使用 NuPAGE 凝胶还可在日常使用中获得优异结果。

转印
如要将蛋白转印到膜上,我们推荐使用 NuPAGE 转印缓冲液 (NP0006),以使用小型印迹模块 (B1000) 进行传统湿式转印。或者,也可使用 Invitrogen Power Blotter 进行快速半干转印或使用 iBlot 2 凝胶转印仪 (IB21001) 进行快速干转印。

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
规格
凝胶厚度1.0 mm
产品线NuPAGE™
数量1个迎新套装。
运输条件经批准可在室温下或置于湿冰上运输
适用于(设备)Mini Gel Tank 小型胶电泳槽
凝胶百分比10%
凝胶尺寸小型
凝胶类型Bis-Tris 体系
分离范围3.5至260 kDa
10孔
Unit SizeEach
内容与储存
• Mini Gel Tank 小型电泳槽
• NuPAGE 10% Bis-Tris 蛋白凝胶(1.0 mm,10-孔)
• NuPAGE MES SDS 电泳缓冲液 (20X)
• NuPAGE LDS 上样缓冲液 (4X)
• NuPAGE 样品还原剂 (10X)
• PageRuler Plus 预染蛋白分子量标准 (10-250 kDa)

常见问题解答 (FAQ)

我使用了你们的一种蛋白质标准品进行转印,发现一些小分子蛋白质条带穿过了膜。我该如何解决这个问题?

•降低电压、电流或缩短转印时间
•确保转膜缓冲液的甲醇浓度合适;可使用浓度为10–20%的甲醇,从而去除SDS-蛋白质复合物中的SDS,并促进蛋白质与膜的结合。
•确保转膜缓冲液的SDS浓度合适(若加入了SDS),SDS浓度不要超过0.02–0.04%。过多的SDS会阻碍蛋白质与膜的结合。过多的SDS会阻碍蛋白质与膜的结合。
•检查膜的孔径和靶标蛋白质的大小。小于10kDa的蛋白质很容易穿过0.45μm孔径的膜。如果您的目标蛋白质小于10 kDa,那么最好使用0.2μm孔径的膜。

我使用了你们的一种蛋白质标准品进行转印,发现一些高分子蛋白质条带转印到膜上的效果很差。可以提供一些提示吗?

•增加电压、电流或转印时间
•凝胶和SDS-蛋白质复合物中的SDS会促进蛋白质从凝胶中洗脱,但抑制蛋白质与膜的结合。这种抑制作用在硝化纤维素膜上的强度大于PVDF膜。对于难以从凝胶中洗脱的蛋白质,如大分子量蛋白质,可在转膜缓冲液中加入少量SDS以改善转印效果。我们建议在组装三明治前将凝胶置于含0.02–0.04% SDS的2x转膜缓冲液(无甲醇)中预平衡10分钟,然后使用含10%甲醇和0.01% SDS的1X转膜缓冲液进行转印。
•甲醇可去除SDS-蛋白质复合物中的SDS,促进蛋白质与膜的结合,但对凝胶本身有一些不良影响,会降低转印效率。甲醇可能导致孔径减小、某些蛋白质发生沉淀以及一些碱性蛋白质带正电荷或变为中性。应确保转膜缓冲液的甲醇浓度不高于10–20%,并使用高质量的分析级甲醇。

我在Tris-甘氨酸凝胶上使用了一种预染标准品,发现蛋白质的分子量与在NuPAGE Bis-Tris凝胶上的分子量不同。这是什么原因?

预染标准品具有与每种蛋白质共价结合的染料,这将导致标准品在不同的缓冲系统(即不同的凝胶)中迁移率不同。因此,使用预染标准品进行分子量估算将仅得出蛋白质的表观分子量。预染标准品可用于分子量估算、确认凝胶迁移和估算转膜效率,但对于需要精确估算分子量的应用,应使用非预染标准品。

我使用了你们的一种蛋白质标准品,并在泳道中看到了一些额外的条带。可以提供一些建议吗?

•上样时,请注意确保相邻样品泳道没有交叉污染。
•确保每个泳道上标准品的量都是正确的。蛋白质上样过多会导致产生额外的条带,这个问题在使用银染凝胶时尤为突出。
•标准品储存不当或反复冻融会导致蛋白质降解。

我使用了你的一种蛋白质分子量标准品,它的条带看起来不太明显,很模糊。我该怎么操作?

建议如下:

•确保每个泳道上标准品的量都是正确的。蛋白质上样过多会导致模糊,这个问题在使用银染凝胶时尤为突出。
•条带在低百分比凝胶中不能很好地分辨。尝试使用更高百分比的凝胶。
•如果在转膜/检测后条带看起来不明显和模糊,可能是由于抗体浓度过高。遵循制造商建议的稀释度或通过斑点印迹确定最适抗体浓度。