iBind™ Western Starter 试剂盒
iBind™ Western Starter 试剂盒
Invitrogen™

iBind™ Western Starter 试剂盒

iBindTM Western Starter 试剂盒包括 iBind Western 设备以及所有使用该自动化 western 处理设备开始所需的耗材和试剂。iBind了解更多信息
Have Questions?
货号数量
SLF1000S1 kit
货号 SLF1000S
价格(CNY)
-
数量:
1 kit
iBindTM Western Starter 试剂盒包括 iBind Western 设备以及所有使用该自动化 western 处理设备开始所需的耗材和试剂。iBind Western 设备可在 western 方案中完成从封闭到洗涤再到通过连续侧向层析 (SLF) 孵育抗体的每一步。SLF 能够及时释放溶液和抗体使其流动到膜上,而无需使用外部电源、振荡器或托盘。

了解更多有关 iBind western 系统的信息›

iBind Western 设备专门处理 iBind 卡 iBind 溶液试剂盒,以处理一种微型膜以进行免疫检测。与传统手动方法相比,iBind 设备具有自动便利性和出色的重现性。通过 SLF,每种溶液可在 ∼2.5 小时内从 iBind 装置孔释放到 iBind 卡上。卡的玻璃纤维基质可实现溶液均匀一致地流过膜,提高抗原-抗体相互作用。

仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
容量1 微型印迹 (8 x 8 cm)
数量1 kit
运行时间∼2.5 小时
检测方法显色、化学发光、荧光
膜兼容性硝酸纤维素、PVDF
产品线iBind™
产品类型启动套装
Unit Size1 kit
内容与储存
• 1 iBind™ Western 设备
• 10 iBind™ 卡(在室温下储存)
• 1 iBind™ 溶液试剂盒(在 2–8°C 下储存)

常见问题解答 (FAQ)

我使用了iBind蛋白质免疫印迹处理系统,结果膜上有很多点。可能原因是什么?

以下是可能原因和解决方案:

- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。
- 膜的转印垫不干净或污染: 使用转印垫前,用去污剂浸泡,然后用纯水彻底清洗。转印垫破损或变色后,则更换新的转印垫。
- 膜未完全湿润: 遵循预润湿膜的说明。
- 膜被指纹或角蛋白污染: 始终佩戴干净的手套并使用镊子来处理膜。处理膜时,仅触碰膜的边缘。
- 封闭不均匀: 孵育皿应足够小,使封闭液能够完全覆盖膜。
- 使用墨水标记膜: 使用墨水对膜进行标记,仅限于印迹膜的低分子量区域。
- iBind卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于膜区域内。
- 膜与iBind卡片接触不良: 加入1 mL 1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液后,立即将膜放到iBind卡片上。使用附带的滚轮,确保接触良好。

最近使用iBind蛋白质免疫印迹处理系统时,运行时间超过3小时。问题出在哪里?

以下是可能原因和解决方案:

- iBind卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于标有“膜”的区域内。
- 膜组在运行前是湿的: 应确保将5 mL 1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液加到iBind卡片的平坦区。不要将溶液加到膜组上。
- iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_man.pdf)的说明,准备1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液。

我使用iBind蛋白质免疫印迹处理系统时,得到了一个较大的分散信号。可能原因是什么?

以下是可能原因和解决方案:

- 蛋白质上样量过高: 减少上样量或稀释样品浓度。
- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。
- 一抗浓度过高: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。

我使用iBind蛋白质免疫印迹处理系统时,得到的信号非常微弱或几乎没有信号。问题出在哪里?

以下是可能原因和解决方案:

- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。转印后,对膜进行染色以衡量转印效率。使用阳性对照和/或分子量标记物。
- 膜未完全湿润: 遵循预润湿膜的说明。
- 一抗浓度过低: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。
- 一抗失活: 通过点印迹法确定抗体活性。
- 一抗与抗原的亲和力较低: 获取更高亲和力的一抗。
- 二抗溶液污染: 始终佩戴手套,瓶子在未使用时始终保持拧紧状态。制备试剂时,只使用纯水。
- 目标蛋白跑出凝胶: 应确保凝胶分离范围与待转印蛋白的大小是匹配的。
- 蛋白质保留较差: 应确保凝胶分离范围与待转印蛋白的大小是匹配的。使用具有相关大小蛋白质的分子量标记物。较大的蛋白质需要较长的转印时间,较小的蛋白质所需转印时间较短。使用具有适当结合能力的膜。
- iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册的说明,准备1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液。
- 向iBind孔中加入溶液时出错: 应确保将溶液加到正确的孔中,并按正确顺序向孔中加液。
- 印迹膜在iBind卡片上的位置不当: 应确保印迹膜上有蛋白质的一面与iBind卡片接触,并放置在标有“膜”的区域。
- 膜组在运行前是湿的: 应确保将5 mL 1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液加到iBind卡片的平坦区。不要将溶液加到膜组上。
- 不同孔中的溶液发生交叉污染: 运行期间,不要移动iBind蛋白印迹处理仪。
- iBind卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于标有“膜”的区域内。
- 膜与iBind卡片接触不良: 加入1 mL 1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液后,立即将膜放到iBind卡片上。使用附带的滚轮,确保接触良好。
- 在运行结束前打开设备: 卡片在设备中时,不要打开设备。重新密封卡片上的孔,可导致泄漏。
- 样品制备不当;抗原性减弱或损毁: SDS和还原剂可能干扰一些抗体/抗原亲和力
- 样品太稀: 提高蛋白质样品的浓度,或增加上样量。
- 蛋白质与膜的结合较弱: 转膜液应含10–20%甲醇。
- 曝光时间不足: 对膜进行二次曝光,并延长曝光时间。
- 底物孵育不充分: 应确保每一步都达到指定时间,或在达到可接受的信噪比时,从底物中取出印迹膜。
- 底物污染: 始终佩戴手套,瓶子在未使用时始终保持拧紧状态。制备试剂时,只使用纯水。
- 印迹太旧: 蛋白质会随时间降解。应使用新制备的印迹。

使用iBind蛋白质免疫印迹处理系统时,我得到了很多非特异性结合。你们有何建议?

以下是可能原因和解决方案:

- 膜被指纹或角蛋白污染: 始终佩戴干净的手套并使用镊子来处理膜。处理膜时,仅触碰膜的边缘。
- 一抗浓度较高: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。
- SDS残留或转印后蛋白质与膜的结合较弱: 根据使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_man.pdf)的指示,遵循免疫检测前的膜准备说明。
- 一抗对蛋白标准品具有亲和力: 向蛋白标准品生产商咨询蛋白标准品与一抗的同源性。
- iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_man.pdf)的说明,准备1X iBind溶液/iBind荧光检测(FD)溶液。