iBind™ Flex 卡
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iBind™ Flex 卡

iBind Flex 卡可与 iBind Flex 蛋白质免疫印迹处理系统配套使用,后者是一种自动化蛋白免疫处理设备,可执行蛋白印迹工作流程从封闭、洗涤再到抗体孵育环节的每一步骤。每种溶液都通过连续横向流动 (SLF)了解更多信息
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货号类型数量
SLF201010张卡
货号 SLF2010
价格(CNY)
3,697.00
10 cards
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类型:
数量:
10张卡
价格(CNY)
3,697.00
10 cards
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iBind Flex 卡可与 iBind Flex 蛋白质免疫印迹处理系统配套使用,后者是一种自动化蛋白免疫处理设备,可执行蛋白印迹工作流程从封闭、洗涤再到抗体孵育环节的每一步骤。每种溶液都通过连续横向流动 (SLF) 从 iBind Flex 设备孔释放到 iBind Flex 卡;然后,溶液被引向卡的堆叠区域。卡内的玻璃纤维基质可让溶液均匀一致地流向膜,从而增加抗原-抗体间的相互作用。

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iBind Flex 卡与 iBind Flex 蛋白质免疫印迹处理系统iBind Flex 溶液试剂盒iBind Flex 荧光检测 (FD) 溶液试剂盒配套使用,可为您的免疫印迹实验方案带来自动化和简便性。每张 iBind Flex 卡最多可以处理一个中型印迹膜、两个微型印迹膜或六个垂直剪切膜条。

仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
数量10张卡
运输条件室温
容量1次中型印迹、6次垂直剪切条印迹、2次小型印迹
检测方法显色、化学发光、荧光
适用于(应用)蛋白免疫印迹
适用于(设备)iBind Flex Western 设备
膜兼容性硝酸纤维素、PVDF
产品线iBind Flex
运行时间∼2.5小时
通量1次中型印迹、6次垂直剪切条印迹、每张卡2次小型印迹
类型
Unit Size10 cards

常见问题解答 (FAQ)

我使用了iBind Flex蛋白质免疫印迹处理系统,结果膜上有很多点。可能原因是什么?

以下是可能原因和解决方案:

- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。
- 膜的转印垫不干净或污染: 使用转印垫前,用去污剂浸泡,然后用纯水彻底清洗。转印垫破损或变色后,则更换新的转印垫。
- 膜未完全湿润: 遵循预润湿膜的说明。
- 膜被指纹或角蛋白污染: 始终佩戴干净的手套并使用镊子来处理膜。处理膜时,仅触碰膜的边缘。
- 封闭不均匀: 孵育皿应足够小,使封闭液能够完全覆盖膜。
- 使用墨水标记膜: 使用墨水对膜进行标记,仅限于印迹膜的低分子量区域。
- iBind Flex卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于标有“膜”的区域内。
- 膜与iBind Flex卡片接触不良: 加入1 mL 1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液后,立即将膜放到iBind Flex卡片上。使用附带的滚轮,确保接触良好。

最近使用iBind Flex蛋白质免疫印迹处理系统时,运行时间超过3小时。问题出在哪里?

以下是可能原因和解决方案:

- iBind Flex卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于标有“膜”的区域内。
- 膜组在运行前是湿的: 应确保将5 mL 1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液加到iBind Flex卡片的平坦区。不要将溶液加到膜组上。
- iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_flex_man.pdf)的说明,准备1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液。

我使用iBind Flex蛋白质免疫印迹处理系统时,得到了一个较大的分散信号。可能原因是什么?

以下是可能原因和解决方案:

- 蛋白质上样量过高: 减少上样量或稀释样品浓度。
- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。
- 一抗浓度过高: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。

我使用iBind Flex蛋白质免疫印迹处理系统时,得到的信号非常微弱或几乎没有信号。问题出在哪里?

以下是可能原因和解决方案:

- 转印效果差或转印不完全: 重复转印。转印后,对膜进行染色以衡量转印效率。使用阳性对照和/或分子量标记物。
- 膜未完全湿润: 遵循预润湿膜的说明。
- 一抗浓度过低: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。
- 一抗失活: 通过点印迹法确定抗体活性。
- 一抗与抗原的亲和力较低: 获取更高亲和力的一抗。
- 二抗溶液污染: 始终佩戴手套,瓶子在未使用时始终保持拧紧状态。制备试剂时,只使用纯水。
- 目标蛋白跑出凝胶: 应确保凝胶分离范围与待转印蛋白的大小是匹配的。
- 蛋白质保留较差: 应确保凝胶分离范围与待转印蛋白的大小是匹配的。使用具有相关大小蛋白质的分子量标记物。较大的蛋白质需要较长的转印时间,较小的蛋白质所需转印时间较短。使用具有适当结合能力的膜。
- iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册的说明,准备1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液。
- 向iBind Flex孔中加入溶液时出错: 应确保将溶液加到正确的孔中,并按正确顺序向孔中加液。
- 印迹膜在iBind Flex卡片上的位置不当: 应确保印迹膜上有蛋白质的一面与iBind Flex卡片接触,并放置在标有“膜”的区域。
- 膜组在运行前是湿的: 应确保将5 mL 1X iBind Flex溶液/iBind荧光检测(FD)溶液加到iBind Flex卡片的平坦区。不要将溶液加到膜组上。
- 不同孔中的溶液发生交叉污染: 运行期间,不要移动iBind Flex蛋白印迹处理仪。
- iBind Flex卡片损坏: 更换新卡片。应确保膜在卡片上的移动仅限于标有“膜”的区域内。
- 膜与iBind Flex卡片接触不良: 加入1 mL 1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液后,立即将膜放到iBind Flex卡片上。使用附带的滚轮,确保接触良好。
- 在运行结束前打开设备: 卡片在设备中时,不要打开设备。重新密封卡片上的孔,可导致泄漏。
- 样品制备不当;抗原性减弱或损毁: SDS和还原剂可能干扰一些抗体/抗原亲和力
- 样品太稀: 提高蛋白质样品的浓度,或增加上样量。
- 蛋白质与膜的结合较弱: 转膜液应含10–20%甲醇。
- 曝光时间不足: 对膜进行二次曝光,并延长曝光时间。
- 底物孵育不充分: 应确保每一步都达到指定时间,或在达到可接受的信噪比时,从底物中取出印迹膜。
- 底物污染: 始终佩戴手套,瓶子在未使用时始终保持拧紧状态。制备试剂时,只使用纯水。
- 印迹太旧: 蛋白质会随时间降解。应使用新制备的印迹。

使用iBind Flex蛋白质免疫印迹处理系统时,我得到了很多非特异性结合。你们有何建议?

以下是可能原因和解决方案:

- 膜被指纹或角蛋白污染: 始终佩戴干净的手套并使用镊子来处理膜。处理膜时,仅触碰膜的边缘。
- 一抗浓度较高: 按照生产商的建议稀释一抗或通过点印迹法确定最佳抗体浓度。
- SDS残留或转印后蛋白质与膜的结合较弱: 根据使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_flex_man.pdf)的指示,遵循免疫检测前的膜准备说明。
- 一抗对蛋白标准品具有亲和力: 向蛋白标准品生产商咨询蛋白标准品与一抗的同源性。
- iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液准备不当: 按照使用手册(https://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/ibind_man.pdf)的说明,准备1X iBind Flex溶液/iBind Flex荧光检测(FD)溶液。