用于细胞凋亡检测的 Annexin V 偶联物
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用于细胞凋亡检测的 Annexin V 偶联物
Invitrogen™

用于细胞凋亡检测的 Annexin V 偶联物

采用流式细胞分析利用 Annexin V 独立 Alexa Fluor、APC、Pacific Blue、PE、FITC 和生物素偶联物检测早期细胞凋亡。
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货号激发/发射流式细胞仪激光线路偶联物
A13204生物素-X
A13201495/519488Alexa Fluor 488
A13199494/518488FITC
A13202578/603532、561Alexa Fluor 568
A13203590/617532Alexa Fluor 594
A23202346/442UVAlexa Fluor 350
A23204650/665633-637Alexa Fluor 647
A35108555/565532、561Alexa Fluor 555
A35109679/702633-637Alexa Fluor 680
A35110650/660633-637APC(别藻蓝素)
A35111565/578488, 532, 561PE
A35122410/455405Pacific Blue
货号 A13204
价格(CNY)
3,815.00
Online Exclusive
Ends: 31-Dec-2025
5,068.00
共减 1,253.00 (25%)
Each
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偶联物:
生物素-X
价格(CNY)
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采用用于细胞凋亡检测的 Annexin V 独立偶联物,可快速而可靠地检测早期细胞凋亡。使用流式细胞分析,Annexin V 偶联物在凋亡细胞与非凋亡细胞之间提供达 100 倍的荧光信号强度差异。
膜联蛋白 V 对磷脂酰丝氨酸 (PS) 具有高亲和力,PS 可暴露于正在凋亡的细胞的外叶上。由于具有这种亲和力,荧光标记的膜联蛋白 V 试剂是细胞凋亡研究中常用的试剂。

Annexin V 偶联物为研究磷脂酰丝氨酸(是细胞凋亡中期标志)的外化提供了快速而可靠的检测方法。经我们的荧光膜联蛋白V偶联物染色后,凋亡细胞和未凋亡细胞显示出不同的荧光强度,流式细胞分析它们的差异通常约为 100 倍。

与 Nexins Research BV 合作,我们提供了较佳且较亮的膜联蛋白 V 偶联物,包括 Alexa Fluor 350、488、555、568、594、647 和 680 膜联蛋白 V 偶联物以及 Annexin V APC、生物素-X、FITC、Pacific Blue 和 PE 偶联物。高荧光性膜联蛋白 V 偶联物为研究磷酯酰丝氨酸的外翻提供了快速而可靠的检测方法,它是细胞凋亡早期指标之一。

Annexin V Pacific Blue 偶联物具有紫色可激发性,这使其成为紫色激光仪器和包括绿色或红色荧光染料的多色实验的理想选择。

我们的膜联蛋白V偶联物的优势包括:
• 与 Invitrogen Alexa Fluor 和 eFluor 染料偶联可产生较亮信号
• 偶联物适用于所有可用激光
• 可用作独立试剂或易于使用的试剂盒

Annexin V 染色检测凋亡细胞仅可在活细胞和组织上进行。如果样品染色后被固定,则需要特定的条件来保留信号。包括使用不含酒精的乙醛固定方法、使用含 Ca2+ 但不含表面活性剂/去污剂的缓冲液。为方便您使用,我们还提供了浓缩膜联蛋白结合缓冲液,用于在细胞凋亡检测中促进膜联蛋白 V 与磷脂酰丝氨酸结合。

仅供科研使用。不可用于诊断程序。
规格
描述Annexin V,生物素-X 偶联物
适用于(设备)流式细胞仪
套装内容包含 1 瓶膜联蛋白 V、生物素-x 偶联物。
反应次数100
产品类型膜联蛋白V偶联
数量500 μL
运输条件湿冰
偶联物生物素-X
Unit SizeEach
内容与储存
在冷藏冰箱 (2–8°C) 中储存。

常见问题解答 (FAQ)

我想用膜联蛋白V标记贴壁细胞,结果发现所有细胞都被标记了,该如何解决这一问题?

用胰蛋白酶或其它试剂处理细胞使贴壁细胞分离,会造成膜损伤,从而使这类细胞被膜联蛋白Ⅴ标记。避免出现这一问题的最好方法是将您的细胞放回培养箱中30-45分钟。每隔几分钟涡旋管/板/瓶以防止细胞再次附着。在此恢复期之后,就可以用膜联蛋白V标记您的细胞并进行流式细胞术分析。

流式细胞术的优势有哪些?

•可测定来自单个细胞的数据。
•可从大量细胞中获得数据,产生细胞群的丰富统计学分析结果。
•由于可测定单个细胞,能够揭示种群的异质性。
•支持多重检测,可鉴定小型亚群。
•可以快速分析数以千计的细胞。
•非常适合血液样本和其他悬浮细胞。
•数据获取后,可以多次重复分析。
•流式细胞仪文件(FCS)可以归档。

我能在流式细胞仪上进行哪些应用?

可进行多种应用,包括免疫分型、细胞周期分析、凋亡检测(如膜联蛋白V染色检测实验)、CellEvent Caspase-3/7检测、TUNEL检测、细胞活性检测、增殖检测(如CellTrace 检测和Click-iT EdU检测)、MitoProbe检测法测定线粒体电势、利用计数微球进行细胞计数。

I want to study apoptosis using an Annexin V conjugate, but with adherent cells via microscopy instead of flow cytometry. Can this be done?

It has been done, but we don‘t recommend it. Both healthy cells and apoptotic cells possess phosphatidylserine on the cell surface, which can be detected with Annexin V, but apoptotic cells have significantly more of it. You can easily tell the difference between these two populations with flow cytometry, because flow cytometers are more sensitive and have a higher throughput. But with a microscope, you cannot always tell the difference, especially for adherent cells. Instead, for microscopy, we recommend a different technique, such as detecting caspases with CellEvent Caspase Detection Reagents.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I am trying to label adherent cells with annexin V and am finding that everything is getting labeled. How can I fix this?

Treating cells with trypsin or other reagents to detach adherent cells causes damage to the membrane, such that cells will be labeled with annexin V. The best way to avoid this problem is to allow your cells to recover for 30-45 min in the incubator. Swirl the tube/plate/flask every few minutes to prevent re-attachment. After this recovery period, you can label your cells with annexin V and analyze by flow cytometry.

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