NuPAGE™ 4-12%,Bis-Tris,1.0–1.5 mm,小型蛋白凝胶
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NuPAGE™ 4-12%,Bis-Tris,1.0–1.5 mm,小型蛋白凝胶

Invitrogen NuPAGE Bis-Tris 预制胶是用于各种分子量蛋白在变性条件下进行高效分离的预制聚丙烯酰胺凝胶。与传统 Tris- 甘氨酸预制胶不同,NuPAGE Bis-Tris 预制胶具有中性 pH了解更多信息
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货号凝胶厚度数量
NP0329BOX17孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0321BOX10孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0321PK210孔1.0 mm2 块凝胶/盒
NP0322BOX12孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0322PK212孔1.0 mm2 块凝胶/盒
NP0323BOX15孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0323PK215孔1.0 mm2 块凝胶/盒
NP0324BOX1孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0326BOX2D 孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0327BOX9孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0329PK217孔1.0 mm2 块凝胶/盒
NP0330BOXIPG 孔1.0 mm10 块凝胶/盒
NP0335BOX10孔1.5 mm10 块凝胶/盒
NP0335PK210孔1.5 mm2 块凝胶/盒
NP0336BOX15孔1.5 mm10 块凝胶/盒
NP0336PK215孔1.5 mm2 块凝胶/盒
货号 NP0329BOX
价格(CNY)
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Ends: 31-Dec-2025
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共减 296.00 (30%)
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孔:
17孔
凝胶厚度:
1.0 mm
数量:
10 块凝胶/盒
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Invitrogen NuPAGE Bis-Tris 预制胶是用于各种分子量蛋白在变性条件下进行高效分离的预制聚丙烯酰胺凝胶。与传统 Tris- 甘氨酸预制胶不同,NuPAGE Bis-Tris 预制胶具有中性 pH 环境,可尽量减少蛋白质修饰。使用 NuPAGE Bis-Tris 预制胶制备蛋白质以用于测序、质谱分析、以及任何其他蛋白质完整性至关重要的技术。同时,也可使用 NuPAGE 预制胶以在日常使用中获得理想的结果。

NuPAGE Bis-Tris 预制胶的特点包括:
•更好的蛋白完整性—优化的样品制备过程可保留您的蛋白质
•广泛的分子量分离范围—选择正确的凝胶和电泳缓冲液有助于实现蛋白质的最佳分离
•更短的电泳时间—在短短 35 分钟内即可分离蛋白质
•更长的有效期— NuPAGE Bis-Tris 预制胶可在室温下储存至少 12 月

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选择适用于您蛋白质分离的 NuPAGE Bis-Tris 预制胶
选择合适的凝胶和电泳缓冲液,有助于实现蛋白的最佳分离。NuPAGE Bis-Tris 蛋白预制胶有 4 种聚丙烯酰胺浓度:8%、10%、12% 和 4–12% 梯度。凝胶有两种尺寸:小型 (8 cm x 8 cm) 或中型 (8.7 cm x 13.3 cm),厚度为 1.0 mm (小型和中型凝胶)或 1.5 mm (仅限小型凝胶规格)。NuPAGE Bis-Tris 预制胶还具有多种孔规格。

NuPAGE Bis-Tris 预制胶适用于变性凝胶电泳应用。要实现理想样品制备,请使用 NuPAGE LDS 上样缓冲液 NuPAGE 样品还原剂。在电泳缓冲液中使用 NuPAGE 抗氧化剂可在电泳期间保持蛋白质的还原状态,并达到最大的条带清晰度。凝胶可搭配 NuPAGE MES SDS 电泳缓冲液使用,以更高效地分离低分子量蛋白,或者搭配 NuPAGE MOPS SDS 电泳缓冲液使用,以分离中至高分子量蛋白。

我们还提供 NuPAGE tris-乙酸凝胶用于分离分子量更大的蛋白质。对于经典的基于 Laemmli 的 Tris- 甘氨酸电泳系统,我们提供了 Novex Tris- 甘氨酸预制胶

用于将蛋白质转印到膜上,我们建议使用 NuPAGE 转膜缓冲液。使用 Pierce Power Blotter 可实现快速半干式转印,或使用 iBlot2 凝胶转膜仪进行快速干式转印。或者,可以使用 XCell II Blot 模块迷你印迹模块.

相关链接
1D 蛋白电泳概述
NuPAGE Tris-Bis 与传统 Tris-甘氨酸凝胶的比较
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
规格
凝胶厚度1.0 mm
长度(公制)8 cm
分离模式分子量
产品线NuPAGE
数量10 块凝胶/盒
推荐应用变性
上样容量最多 15 µL
有效期12个月
运输条件室温
储存要求储存于 4–25°C。切勿冷冻。
宽度(公制)8 cm
适用于(设备)Mini Gel Tank 小型胶电泳槽, XCell SureLock Mini-Cell 电泳槽操作指南
凝胶百分比4 至 12%
凝胶尺寸小型
凝胶类型Bis-Tris 体系
分离范围3.5至260 kDa
分离类型变性
17孔
Unit SizeEach
内容与储存
一盒中包含 10 支凝胶。于4–25°C 下储存。切勿冷冻。有效期为 12 个月。

常见问题解答 (FAQ)

我将蛋白质置于Tris-甘氨酸凝胶上在非变性条件下进行电泳。蛋白质的pI高于Tris-甘氨酸转膜缓冲液的pH。你们建议如何对蛋白质进行转印?

•将Tris-甘氨酸转膜缓冲液的pH增加至9.2,可使pl低于9.2的所有蛋白质朝阳极方向迁移。
•使用Tris-甘氨酸转膜缓冲液,并在凝胶两侧各放一张膜。碱性高于转膜缓冲液pH的蛋白质,将被凝胶阴极侧的膜捕获。随后,可以用相同的方式处理两张膜。
•转印前,将凝胶置于含0.1% SDS的Tris-甘氨酸转膜缓冲液中孵育15分钟。少量的SDS会给予蛋白质足够的电荷,使蛋白质朝阳极端单向移动,并且在大部分情况下不会使蛋白质变性。然后,使用常规Tris-甘氨酸转膜缓冲液进行转印。

能否使用Invitrogen半干转仪对NuPAGE Bis-Tris凝胶进行转印?

NuPAGE Bis-Tris凝胶在Invitrogen半干转仪中的转印效率不如在XCell II转印模块中高。如果您决定使用Invitrogen半干转仪进行NuPAGE -Tris凝胶转印,则应使用下述实验方案以确保蛋白质的有效转印。

1.如下所述,使用20X NuPAGE转膜缓冲液制备100 mL的2X NuPAGE转膜缓冲液:
NuPAGE转膜缓冲液(20X)10.0 mL
NuPAGE抗氧化剂(用于还原型样品)0.1 mL
甲醇10.0 mL
去离子水79.9 mL
总体积100 mL
如果您转印的是大分子蛋白质,请参见下方备注。

2.在转膜缓冲液中浸泡滤纸和印迹膜。如果您在使用Invitrogen预切膜/滤纸三明治,则应在凝胶或膜的外侧分别使用3张滤纸(每张滤纸厚0.4 mm)。如果您未使用Invitrogen预切膜/滤纸三明治,则使用2张厚滤纸。

3.将凝胶置于转膜缓冲液(中型凝胶使用100 mL,小型凝胶使用50 mL)中,放置在定轨摇床上平衡10分钟,从而去除转印液中的盐,以避免电导率和产热的增加。

4.如下所述,在阳极板上装配凝胶/膜/滤纸三明治:
滤纸
滤纸
滤纸
滤纸

凝胶
凝胶
凝胶

5.在20 V恒定电压条件下转印30-60分钟。

备注:转印大分子量蛋白质(>100 kDa)时,可在装配三明治前,将凝胶置于含0.02-0.04% SDS 的2X NuPAGE转膜缓冲液(无甲醇)中预平衡10分钟。

配制20X NuPAGE转膜缓冲液时,是否需要加入氯丁醇?

氯丁醇可用作NuPAGE转膜缓冲液的防腐剂,但对于蛋白质的有效转印并不是必要的。若配制缓冲液时未加入氯丁醇,则应注意缓冲液不能长期稳定保存。建议在配制后2周内用完。

NuPAGE凝胶转印能否使用碳酸盐或CAPS转膜缓冲液?

我们不建议使用碳酸盐或CAPS转膜缓冲液进行NuPAGE凝胶转印,因为这会降低转印效率。此外,这些缓冲液的高pH环境(>pH 9)会使NuPAGE抗氧化剂丧失功能。

对于改善NuPAGE凝胶上大分子蛋白的转印效果,你们有何建议?

为提高NuPAGE凝胶上大分子蛋白[高分子量蛋白]的转印效率,我们建议在安装“三明治”前,将凝胶置于含有0.02–0.04% SDS的2x NuPAGE转膜缓冲液(无甲醇)中预平衡10分钟,然后使用含甲醇和0.01%SDS的1XNuPAGE转膜缓冲液进行转印。

引用和文献 (3)

引用和文献
Abstract
Rapid purification and mass spectrometric characterization of mitochondrial NADH dehydrogenase (Complex I) from rodent brain and a dopaminergic neuronal cell line.
Authors:Schilling B, Bharath M M S, Row RH, Murray J, Cusack MP, Capaldi RA, Freed CR, Prasad KN, Andersen JK, Gibson BW,
Journal:Mol Cell Proteomics
PubMed ID:15591592
'Oxidative stress and mitochondrial dysfunction signify important biochemical events associated with the loss of dopaminergic neurons in Parkinson''s disease (PD). Studies using in vitro and in vivo PD models or tissues from diseased patients have demonstrated a selective inhibition of mitochondrial NADH dehydrogenase (Complex I of the OXPHOS electron transport ... More
Intrinsic protein fluorescence interferes with detection of tear glycoproteins in SDS-polyacrylamide gels using extrinsic fluorescent dyes.
Authors:Zhao Z, Aliwarga Y, Willcox MD,
Journal:J Biomol Tech
PubMed ID:18166676
Intrinsic protein fluorescence may interfere with the visualization of proteins after SDS-polyacrylamide electrophoresis. In an attempt to analyze tear glycoproteins in gels, we ran tear samples and stained the proteins with a glycoprotein-specific fluorescent dye. The fluorescence detected was not limited to glycoproteins. There was strong intrinsic fluorescence of proteins ... More
Trypanosoma brucei glycoproteins contain novel giant poly-N-acetyllactosamine carbohydrate chains.
Authors:Atrih A, Richardson JM, Prescott AR, Ferguson MA,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:15509560
The flagellar pocket of the bloodstream form of the African sleeping sickness parasite Trypanosoma brucei contains material that binds the beta-d-galactose-specific lectin ricin (Brickman, M. J., and Balber, A. E. (1990) J. Protozool. 37, 219-224). Glycoproteins were solubilized from bloodstream form T. brucei cells in 8 M urea and 3% ... More